XÁC ĐỊNH SỰ HIỆN DIỆN CỦA GEN CPB Ở VI KHUẨN CLOSTRIDIUM PERFRINGENS TỪ PHÂN LẬP TỪ GÀ MẮC VIÊM RUỘT HOẠI TỬ TẠI THÀNH PHỐ HUẾ
Tập 135 Số 3B (2026), Nghiên Cứu
Tập 135 Số 3B (2026)

XÁC ĐỊNH SỰ HIỆN DIỆN CỦA GEN CPB Ở VI KHUẨN CLOSTRIDIUM PERFRINGENS TỪ PHÂN LẬP TỪ GÀ MẮC VIÊM RUỘT HOẠI TỬ TẠI THÀNH PHỐ HUẾ

Nghiên Cứu
Đã xuất bản 2026-06-03
Nguyen Dinh Thuy Khuong
Trường Đại học Nông Lâm, Đại học Huế, 102 Phùng Hưng, Huế, Việt Nam
Nguyen Xuan Hoa
Trường Đại học Nông Lâm, Đại học Huế, 102 Phùng Hưng, Huế, Việt Nam
Huynh Van Chuong
Viện Công nghệ sinh học, Đại học Huế, Nguyễn Đình Tứ, Huế, Việt Nam
Ta Dang Y Vi
Viện Công nghệ sinh học, Đại học Huế, Nguyễn Đình Tứ, Huế, Việt Nam
Hoang Nhat Ha
Viện Công nghệ sinh học, Đại học Huế, Nguyễn Đình Tứ, Huế, Việt Nam
Nguyen Bao Hung
Viện Công nghệ sinh học, Đại học Huế, Nguyễn Đình Tứ, Huế, Việt Nam

Từ khóa

poultry diseases
Clostridium perfringens
broiler chicken
cpb gene
Hue City
necrotic enteritis gia cầm
Clostridium perfringens
gà
gen cpb
Thành phố Huế
viêm ruột hoại tử

Tóm tắt

Nghiên cứu được thực hiện nhằm phân lập và xác định sự hiện diện của gen cpb ở vi khuẩn Clostridium perfringens từ các mẫu bệnh phẩm thu thập tại Thành phố Huế. Tổng cộng 200 mẫu phân từ gà nghi mắc bệnh viêm ruột hoại tử đã được thu thập tại 4 khu vực: Hương Thủy, Quảng Điền, Phú Vang và Hương Trà (cũ). Bằng các phương pháp nuôi cấy kỵ khí và giám định đặc tính sinh vật hóa học truyền thống, 116 chủng phân lập C. perfringens đã được xác định, chiếm tỷ lệ 58,00%. Tỷ lệ nhiễm có xu hướng tăng theo quy mô chăn nuôi, đạt cao nhất ở các trang trại quy mô lớn (66,67%, p < 0,05), trong khi yếu tố độ tuổi không gây ra sự sai khác đáng kể (p > 0,05). Tất cả các chủng phân lập đều mang đặc tính sinh học điển hình của loài. Thông qua kỹ thuật PCR, nghiên cứu đã phát hiện 28/116 chủng phân lập mang gen độc tố cpb, chiếm tỷ lệ 24,14%. Kết quả này cho thấy sự hiện diện của các chủng C. perfringens mang gen cpb đang lưu hành tại địa phương. Nghiên cứu cung cấp cơ sở dữ liệu quan trọng cho việc dự báo dịch tễ và xây dựng chiến lược kiểm soát bệnh viêm ruột hoại tử tại khu vực.

Tài liệu tham khảo

  1. Skinner, J.T., Bauer, S., Young, V., Pauling, G., and Wilson, J.J.A.d. (2010), An economic analysis of the impact of subclinical (mild) necrotic enteritis in broiler chickens, Avian Diseases, 54, 1237–1240.
  2. Moore, R.J. (2016), Necrotic enteritis predisposing factors in broiler chickens, Avian Pathology, 45, 275–281.
  3. Rood, J.I., Adams, V., Lacey, J., Lyras, D., McClane, B.A., Melville, S.B., Moore, R.J., Popoff, M.R., Sarker, M.R., Songer, J.G., Uzal, F.A., and Van Immerseel, F. (2018), Expansion of the Clostridium perfringens toxin-based typing scheme, Anaerobe, 53, 5–10.
  4. Nguyễn Thị Thắm, Vũ Thị Ngọc, Nguyễn Xuân Huyên, và Nguyễn Văn Giáp (2020), Tỷ lệ nhiễm và đặc điểm sinh học của vi khuẩn Clostridium perfringens phân lập từ gà mắc bệnh viêm ruột hoại tử tại một số tỉnh phía Bắc, Tập chí khoa học kỹ thuật thú y, 27, 45–52.
  5. Nguyen T.T., Vu-Khac H., Nguyen T.D. (2020), Isolation and characterization of Clostridium perfringens strains isolated from ostriches (Struthio camelus) in Vietnam, Veterinary World, 13(8):1679-1684.
  6. Yoo, H.S., Lee, S.U., Park, K.Y., and Park, Y.H. (1997), Molecular typing and epidemiological survey of prevalence of Clostridium perfringens types by multiplex PCR, Journal Clinical Microbiology, 35, 228–232.
  7. Fathima, S., Hakeem, W.G.A., Shanmugasundaram, R., and Selvaraj, R.K. (2022), Necrotic Enteritis in Broiler Chickens: A Review on the Pathogen, Pathogenesis and Prevention, 10, 1958.
  8. Abd El-Hack, M.E., El-Saadony, M.T., Elbestawy, A.R., El-Shall, N.A., Saad, A.M., Salem, H.M., El-Tahan, A.M., Khafaga, A.F., Taha, A.E., AbuQamar, S.F., and El-Tarabily, K.A. (2022), Necrotic enteritis in broiler chickens: disease characteristics and prevention using organic antibiotic alternatives – a comprehensive review, Poultry Science, 101, 101590.
  9. Kerek, Á., Szabó, Á., Barnácz, F., Csirmaz, B., Kovács, L., and Jerzsele, Á. (2025), Antimicrobial susceptibility profiles of commensal Clostridium perfringens isolates from chickens in Hungarian poultry farms between 2022 and 2023, Frontier Veterinary Sciences, 12:1589747.
  10. Mohiuddin, M., Song, Z., Liao, S., Qi, N., Li, J., Lv, M., Lin, X., Cai, H., Hu, J., Liu, S., Zhang, J., Gu, Y., and Sun, M. (2023), Animal model studies, antibiotic resistance and toxin gene profile of ne reproducing Clostridium perfringens type a and type g strains isolated from commercial Poultry Farms in China, 11, 622.
  11. Mehdizadeh Gohari, I., A. Navarro, M., Li, J., Shrestha, A., Uzal, F., & A. McClane, B. (2021). Pathogenicity and virulence of Clostridium perfringens. Virulence, 12(1), 723–753.
  12. Grenda, T., Jarosz, A., Sapała, M., Grenda, A., Patyra, E., & Kwiatek, K. (2023). Clostridium perfringens—opportunistic foodborne pathogen, its diversity and epidemiological significance. Pathogens, 12(6), 768.
  13. Miyamoto K, Li J, McClane BA. (2012), Enterotoxigenic Clostridium perfringens: detection and identification, Microbes Environment, 27(4):343-9.
  14. Thi, T., Vu-Khac, H., and Duc, T. (2021), Characterisation of Clostridium perfringens isolated from chickens in Vietnam, Veterinarni medicina, 66, 431–439.
  15. Gökce, H.I., Genç, O., and Gökce, G. (2005), Sero-prevalence of Clostridium perfringens alpha, beta and epsilon toxins in sheep in Kars province, Turkish Journal of Veterinary & Animal Sciences, 29, 637–642.