ẢNH HƯỞNG CỦA THỜI GIAN BẢO QUẢN VÀ TỶ LỆ PHA LOÃNG ĐẾN CHẤT LƯỢNG TINH TRÙNG GÀ TRE BẢO QUẢN Ở 5 ℃
Tập 135 Số 1S-1 (2026), Special Issue: IFB 2025
Tập 135 Số 1S-1 (2026)

ẢNH HƯỞNG CỦA THỜI GIAN BẢO QUẢN VÀ TỶ LỆ PHA LOÃNG ĐẾN CHẤT LƯỢNG TINH TRÙNG GÀ TRE BẢO QUẢN Ở 5 ℃

Special Issue: IFB 2025
https://doi.org/10.26459/hueunijns.v135i1S-1.8058
Đã xuất bản 2026-06-10
Trần Thị Thanh Khương*
Phòng thí nghiệm Tế bào gốc, Viện Thực phẩm và Công nghệ sinh học, Đại học Cần Thơ, Cần Thơ, Việt Nam
Lâm Khánh Duy Nguyễn
Phòng thí nghiệm Tế bào gốc, Viện Thực phẩm và Công nghệ sinh học, Đại học Cần Thơ, Cần Thơ, Việt Nam
Chí Công Trần
Phòng thí nghiệm Tế bào gốc, Viện Thực phẩm và Công nghệ sinh học, Đại học Cần Thơ, Cần Thơ, Việt Nam
Huỳnh Châu Minh Nguyễn
Phòng thí nghiệm Tế bào gốc, Viện Thực phẩm và Công nghệ sinh học, Đại học Cần Thơ, Cần Thơ, Việt Nam
Trường Thoại Kha Phạm
Công ty Cổ Phần GREENFEED Việt Nam, Nhựt Chánh, Bến Lức, Long An, Việt Nam
PDF

Từ khóa

5°C
dilution ratio
storage duration
sperm
Tre chicken 5°C
bảo quản
gà Tre
thời gian
tinh trùng
tỷ lệ pha loãng

Cách trích dẫn

1.
Trần TTK, Nguyễn LKD, Trần CC, Nguyễn HCM, Phạm TTK. ẢNH HƯỞNG CỦA THỜI GIAN BẢO QUẢN VÀ TỶ LỆ PHA LOÃNG ĐẾN CHẤT LƯỢNG TINH TRÙNG GÀ TRE BẢO QUẢN Ở 5 ℃. hueuni-jns [Internet]. 10 Tháng Sáu 2026 [cited 12 Tháng Sáu 2026];135(1S-1):113-21. Available at: https://jos.hueuni.edu.vn/index.php/hujos-ns/article/view/8058
##plugins.generic.citationStyleLanguage.style.acm-sig-proceedings## ##plugins.generic.citationStyleLanguage.style.acs-nano## ##plugins.generic.citationStyleLanguage.style.apa## ##plugins.generic.citationStyleLanguage.style.associacao-brasileira-de-normas-tecnicas## ##plugins.generic.citationStyleLanguage.style.chicago-author-date## ##plugins.generic.citationStyleLanguage.style.harvard-cite-them-right## ##plugins.generic.citationStyleLanguage.style.ieee## ##plugins.generic.citationStyleLanguage.style.modern-language-association## ##plugins.generic.citationStyleLanguage.style.turabian-fullnote-bibliography## ##plugins.generic.citationStyleLanguage.style.vancouver##

Tải trích dẫn

##plugins.generic.citationStyleLanguage.download.ris## ##plugins.generic.citationStyleLanguage.download.bibtex##
Crossref
Scopus
Google Scholar
Europe PMC

Tóm tắt

Bảo quản tinh trùng phục vụ quá trình thụ tinh nhân tạo là một kỹ thuật quan trọng trong duy trì và phát triển nhanh số lượng vật nuôi. Nghiên cứu này được thực hiện nhằm xác định tỷ lệ pha loãng và thời gian bảo quản tối ưu của tinh trùng gà Tre (Gallus gallus domesticus) ở 5 °C. Tinh dịch được thu nhận, đánh giá chất lượng ban đầu, sau đó pha loãng với môi trường SCE ở bốn tỷ lệ khác nhau (1:4, 1:6, 1:8 và 1:10) và bảo quản trong 12 giờ. Chất lượng tinh trùng được theo dõi tại 5 thời điểm (0, 3, 6, 9 và 12 giờ) thông qua các chỉ tiêu: di động tổng số, di động tiến tới, tỷ lệ sống, tính toàn vẹn màng và tính toàn vẹn acrosome. Kết quả cho thấy tỷ lệ pha loãng 1:6 duy trì chất lượng tinh trùng tương đương 1:4 (p > 0,05) và cao hơn đáng kể so với 1:8 và 1:10 (p < 0,05) ở hầu hết các chỉ tiêu. Sau 9 giờ bảo quản ở tỷ lệ 1:6, các giá trị lần lượt đạt: di động tổng số 56,92%, di động tiến tới 38,74%, tỷ lệ sống 69,38%, toàn vẹn màng 59,97% và tính toàn vẹn acrosome 75,36%. Kết quả cho thấy bảo quản tinh trùng gà Tre ở 5 °C với tỷ lệ pha loãng 1:6 trong tối đa 9 giờ là điều kiện bảo quản hiệu quả trong nghiên cứu này, có ý nghĩa thực tiễn trong bảo tồn và nhân giống giống gà bản địa Việt Nam.

https://doi.org/10.26459/hueunijns.v135i1S-1.8058
PDF

Tài liệu tham khảo

  1. Ngo TKC, Esatu W, Hoang HH, Vu CT, Nguyen CD, Ninh TH, et al. Monograph on indigenous chicken breeds/ecotypes in Vietnam. ILRI Res Rep. 2025;(123):1-21.
  2. Trần TTK, Lâm PT, Nguyễn TKK, Nguyễn TN, Dương NDT. Cryobank: Giải pháp khôi phục nhanh đàn vật nuôi sau dịch bệnh. Tạp chí Khoa học Đại học Cần Thơ. 2022;58(SDMD):104–114.
  3. Arif A, Zahoor N, Tang J, Tang M, Dong L, Khan SZ, et al. Cryopreservation strategies for poultry semen: a comprehensive review of techniques and applications. Vet Sci. 2025;12(2):145.
  4. Izanloo H, Soleimanzadeh A, Bucak MN, Imani M, Zhandi M. The effects of glutathione supplementation on post-thawed turkey semen quality and oxidative stress parameters and fertilization, and hatching potential. Theriogenology. 2022;179:32-8.
  5. Bustani GS, Baiee FH. Semen extenders: an evaluative overview of preservative mechanisms of semen and semen extenders. Vet World. 2021;14(5):1220-33.
  6. Thiangthientham P, Kallayanathum W, Juntautsa S, Leethongdee S. Sesame oil as a partial substitute for egg yolk in goat semen extenders. Animal Reproduction Science. 2024;266:107500.
  7. Prell MJ, McCue PM, Moffett PD, Graham JK. Motility and fertility evaluation of thawed frozen stallion semen after 24 hours of cooled storage. J Equine Vet Sci. 2020;90:102983.
  8. Blesbois E. Biological features of the avian male gamete and their application to biotechnology of conservation. J Poult Sci. 2012;49:141-9.
  9. Siudzińska A, Łukaszewicz E. Effect of semen extenders and storage time on sperm morphology of four chicken breeds. J Appl Poult Res. 2008;17:101-8.
  10. Lake PE, Ravie O. An exploration of cryoprotective compounds for fowl spermatozoa. Br Poult Sci. 1984;25:145-50.
  11. Seigneurin F, Grasseau I, Chapuis H, Blesbois E. An efficient method of guinea fowl sperm cryopreservation. Poult Sci. 2013;92:2988-96.
  12. Siari S, Mehri M, Sharafi M. Supplementation of Beltsville extender with quercetin improves the quality of frozen-thawed rooster semen. Br Poult Sci. 2021;63:252-60.
  13. Kowalczyk AM, Klećkowska-Nawrot J, Łukaszewicz ET. Effect of selenium and vitamin E addition to the extender on liquid stored capercaillie (Tetrao urogallus) semen quality. Reproduction in Domestic Animals. 2017;52(4):603-9.
  14. Chankitisakul V, Boonkum W, Kaewkanha T, Pimprasert M, Ratchamak R, Authaida S, et al. Fertilizing ability and survivability of rooster sperm diluted with a novel semen extender supplemented with serine for practical use on smallholder farms. Poultry Science. 2022;101(12):102188.
  15. Duy NLK, Liêm BT, Vy NPN, Khương TTT. Ảnh hưởng của môi trường bảo quản và thời gian bảo quản đến chất lượng tinh trùng dê. TNU J Sci Technol. 2024;229(05):227-34.
  16. Salamon S, Maxwell WMC. Storage of ram semen. Animal Reproduction Science. 2000;62(1):77-111.
  17. Viveiros ATM, Leal MC. Sperm dilution ratio affects post-thaw motility rate and velocity of Prochilodus lineatus (Characiformes) sperm. Zygote. 2016;24(5):662-7.
  18. Bonato M, Smith MAMJ, Malecki IA, Cloete SWP. The effect of dilution rate and successive semen collections on sperm quality and sexual motivation of sexually mature South African Merino rams. Tropical Animal Health and Production. 2021;53(1):182.
  19. Di Iorio M, Rusco G, Iampietro R, Colonna MA, Zaniboni L, Cerolini S, et al. Finding an effective freezing protocol for turkey semen: benefits of ficoll as non-permeant cryoprotectant and 1:4 as dilution rate. Animals. 2020;10(3):421.
  20. Santiago-Moreno J, Castaño C, Toledano-Díaz A, Coloma MA, López-Sebastián A, Prieto MT, et al. Semen cryopreservation for the creation of a Spanish poultry breeds cryobank: Optimization of freezing rate and equilibration time1. Poultry Science. 2011;90(9):2047-53.
  21. Pérez-Marín CC, Arando A, Mora C, Cabello A. Fertility after insemination with frozen-thawed sperm using N-methylacetamide extender on the Combatiente Español avian breed. Animal Reproduction Science. 2019;208:106111.
  22. Longobardi V, Zullo G, Salzano A, De Canditiis C, Cammarano A, De Luise L, et al. Resveratrol prevents capacitation-like changes and improves in vitro fertilizing capability of buffalo frozen-thawed sperm. Theriogenology. 2017;88:1-8.
  23. Abioja MO, Abiona JA, Oke OE, Ewuola EO, Oso AO, Sogunle OM, et al. Dietary vitamin E improves sperm cell morphology and membrane integrity in broiler breeder chickens. Rev Bras Cienc Avic. 2022;24(1):1-8.
  24. Bezerra LGP, Silva AM, Moreira SSJ, de Souza CMP, Silva AR. Establishment of methods to analyze the structural and functional integrity of the quail (Coturnix coturnix japonica) sperm plasma membrane. British Poultry Science. 2023;64(3):429-34.
  25. Kim SW, Lee J-Y, Kim C-L, Ko YG, Kim B. Evaluation of rooster semen quality using CBB dye based staining method. J Anim Reprod Biotechnol. 2022;37(1):55-61.
  26. Zong Y, Li Y, Sun Y, Mehaisen GMK, Ma T, Chen J. Chicken sperm cryopreservation: review of techniques, freezing damage, and freezability mechanisms. Agriculture. 2023;13(2):445.
  27. Partyka A, Łukaszewicz E, Niżański W. Lipid peroxidation and antioxidant enzymes activity in avian semen. Animal Reproduction Science. 2012;134(3):184-90.
  28. Partyka A, Bonarska-Kujawa D, Sporniak M, Strojecki M, Niżański W. Modification of membrane cholesterol and its impact on frozen–thawed chicken sperm characteristics. Zygote. 2016;24(5):714-23.
Creative Commons License

công trình này được cấp phép theo Creative Commons Ghi công-Chia sẻ tương tự 4.0 License International .

Bản quyền (c) 2026 Array