PHÂN LẬP VÀ ĐÁNH GIÁ ĐẶC TÍNH SINH HỌC CỦA VI KHUẨN LACTIC ĐƯỢC PHÂN LẬP TỪ NEM CHUA BẾN TRE
PDF

Từ khóa

γ–aminobutyric acid (GABA)
đặc tính sinh học
nem chua
vi khuẩn lactic acid biological characteristics
fermented pork
lactic acid bacte

Cách trích dẫn

1.
Nguyễn NT, Trần TTD, Lưu MC, Bùi H Đăng L, Nguyễn VT, Đoàn TKT, Huỳnh XP. PHÂN LẬP VÀ ĐÁNH GIÁ ĐẶC TÍNH SINH HỌC CỦA VI KHUẨN LACTIC ĐƯỢC PHÂN LẬP TỪ NEM CHUA BẾN TRE. hueuni-jns [Internet]. 10 Tháng Sáu 2026 [cited 12 Tháng Sáu 2026];135(1S-1):5-17. Available at: https://jos.hueuni.edu.vn/index.php/hujos-ns/article/view/8059

Tóm tắt

Nem chua là một sản phẩm lên men truyền thống và là nguồn cung cấp dồi dào các vi khuẩn lactic (LAB) có tiềm năng probiotic. Việc phân lập và đánh giá một số đặc tính sinh học của LAB từ nem chua Bến Tre cũng như tiềm năng probiotic cần được nghiên cứu và ứng dụng như nguồn giống thuần chủng. Kết quả đã phân lập được 20 chủng LAB từ 5 mẫu nem chua được thu nhận từ 4 cơ sở ở Bến Tre. Trong đó, chủng XL1.3 cho hàm lượng acid cao nhất (25,54 g/L) sau 3 ngày nuôi cấy trong môi trường MRS. Khi bổ sung 3% (w/v) monosodium glutamate (MSG) trong môi trường MRS, tất cả các chủng đều có khả năng sinh γ–aminobutyric acid (GABA) với nồng độ 1,24–3,24 mg/mL sau 2 ngày lên men. Kết quả đánh giá tiềm năng probiotic của 8 chủng có khả năng tổng hợp GABA cho thấy chỉ có chủng NA1.3 có thể sống sót ở pH 2 và các chủng phân lập được có khả năng tồn tại ở pH 3, trong đó chủng NA2.4 đạt mật số cao nhất (7,05 log CFU/mL). Về khả năng kết dính, các chủng PD1.4, NA2.4 và NA1.3 có tỷ lệ kết dính cao (19,99–21,48%), trong đó chủng NA1.3 không chỉ là chủng duy nhất sống sót ở pH 2 mà còn có khả năng kết dính tốt. Kết quả cho thấy NA1.3 có khả năng tồn tại ở dạ dày và tiềm năng bám dính tại ruột, là hai đặc điểm quan trọng của một chủng probiotic triển vọng ứng dụng trong lên men nem chua.

https://doi.org/10.26459/hueunijns.v135i1S-1.8059
PDF

Tài liệu tham khảo

  1. Franz CMAP, Huch M, Mathara JM, Abriouel H, Benomar N, Reid G, et al. African fermented foods and probiotics. Int J Food Microbiol. 2014;190:84-96.
  2. Rodríguez LGR, Mohamed F, Bleckwedel J, Medina R, Vuyst LD, Hebert EM, et al. Diversity and functional properties of lactic acid bacteria isolated from wild fruits and flowers present in Northern Argentina. Front Microbiol. 2019;10:1091.
  3. Pereira N, Alegria C, Aleixo C, Martins P, Goncalves EM, Abreu M. Selection of autochthonous lab strains of unripe green tomato towards the production of highly nutritious lacto-fermented ingredients. Foods. 2021;10(12):2916.
  4. Li S, Tao Y, Li D, Wen G, Zhou J, Manickam S, et al. Fermentation of blueberry juices using autochthonous lactic acid bacteria isolated from fruit environment: Fermentation characteristics and evolution of phenolic profiles. Chemosphere. 2021;276:130090.
  5. US Food and Drug Administration. Generally Recognized as Safe (GRAS). US Food and Drug Administration; 2023.
  6. Ly D, Mayrhofer S, Yogeswara IBA, Nguyen TH, Domig KJ. Identification, classification and screening for γ-amino-butyric acid production in lactic acid bacteria from Cambodian fermented foods. Biomolecules. 2019;9(12):768.
  7. Phuengjayaem S, Booncharoen A, Tanasupawat S. Characterization and comparative genomic analysis of gamma-aminobutyric acid (GABA)-producing lactic acid bacteria from Thai fermented foods. Biotechnol Lett. 2021;43(8):1637-1648.
  8. Huynh XP, Le QV, Luu MC, Bui HDL, Nguyen NT, Dao TP, et al. Isolation and selection of lactic acid bacteria with the capacity of producing γ-aminobutyric acid (GABA) and antimicrobial activity: its application in fermented meat product. Curr Nutr Food Sci. 2023;19:831-837.
  9. Fijan S. Microorganisms with claimed probiotic properties: an overview of recent literature. Int J Environ Res Public Health. 2014;11(5):4745-4767.
  10. Cục Thống kê tỉnh Bến Tre. Niên giám thống kê tỉnh Bến Tre năm 2023. Bến Tre: Cục Thống kê tỉnh Bến Tre; 2024.
  11. Vos P, Garrity MG, Jones D, Krieg RN, Ludwig W, Rainey AF, et al. Bergey's Manual of Systematic Bacteriology. Volume 3: The Firmicutes. 2nd Edition. New York: Springer New York; 2009.
  12. Ngouénam JR, Kenfack CHM, Kouam EMF, Kaktcham PM, Maharjan R, Ngoufack FZ. Lactic acid production ability of Lactobacillus sp. from four tropical fruits using their by-products as carbon source. Heliyon. 2021;7(5):e07079.
  13. Le QV, Pantuprakit C, Luu MC, Nguyen PTT, Nguyen NT, Tran TG, et al. Isolation and selection of γ-aminobutyric acid producing lactic acid bacteria and application in GABA-enriched tomato juice fermentation. Cienc Rural. 2024;55:e20230510.
  14. Zhang Q, Xiang J, Zhang L, Zhu X, Evers J, van der Werf W, et al. Optimizing soaking and germination conditions to improve gamma-aminobutyric acid content in japonica and indica germinated brown rice. J Funct Foods. 2014;10:283-291.
  15. Hassanzadazar H, Ehsani A, Mardani K, Hesari J. Investigation of antibacterial, acid and bile tolerance properties of lactobacilli isolated from Koozeh cheese. Vet Res Forum. 2012;3(3):181-185.
  16. Naghili H, Tajik H, Mardani K, Rouhani SMR, Ehsani A, Zare P. Validation of drop plate technique for bacterial enumeration by parametric and nonparametric tests. Vet Res Forum. 2013;4(3):179-183.
  17. Tuo Y, Yu H, Ai L, Wu Z, Guo B, Chen W. Aggregation and adhesion properties of 22 Lactobacillus strains. J Dairy Sci. 2013;96(7):4252-4257.
  18. Nguyen L, Hwang ES. Quality characteristics and antioxidant activity of yogurt supplemented with aronia (Aronia melanocarpa) juice. Prev Nutr Food Sci. 2016;21(4):330-337.
  19. König H, Fröhlich J. Lactic Acid Bacteria. In: König H, Unden G, Fröhlich J, editors. Biology of Microorganisms on Grapes, in Must and in Wine. Berlin, Heidelberg: Springer Berlin Heidelberg; 2009. p. 3-29.
  20. Lahtinen S, Ouwehand AC, Salminen S, von Wright A, editors. Lactic acid bacteria: microbiological and functional aspects. 4th ed. Boca Raton (FL): CRC Press; 2011.
  21. Duong THN, Mai TH, Lu BH, Ly TXM, Bui TQH. Isolation and selection of lactic acid bacteria strains present in “Nem chua thit” for use as stater cultures. Can Tho Uni J Sci. 2023;59(3B):86-93.
  22. Nguyen TH, Le TMA, Nguyen TBT, Ngo XN, Tran TD, Pham TTT, et al. Isolation, selection and application of lactic acid bacteria for testing process of producing fermented oyster mushroom. Vietnam J Agr Sci. 2021;19(3):379-388.
  23. Truong TTN, Le TMT, Tran NH, Nguyen TMT, Nguyen NT, Bui HDL, et al. Isolation and selection of lactic acid bacteria and application in fermention of mushroom (Volveriella volvacea). Thai Nguyen Uni J Sci Tech. 2020;225(01):3-10.
  24. Zhang Z, Tsapekos P, Alvarado-Morales M, Zhu X, Zervas A, Jacobsen CS, et al. Enhanced fermentative lactic acid production from source-sorted organic household waste: Focusing on low-pH microbial adaptation and bio-augmentation strategy. Sci Total Environ. 2022;808:152129.
  25. Elferink SJO, Krooneman J, Gottschal JC, Spoelstra SF, Faber F, Driehuis F. Anaerobic conversion of lactic acid to acetic acid and 1, 2-propanediol by Lactobacillus buchneri. Appl Environ Microbiol, 2001;67(1):125-132.
  26. Langa S, Santos S, Flores JA, Peirotén Á, Rodríguez S, Curiel JA, Landete JM. Selection of GABA-producing lactic acid bacteria strains by polymerase chain reaction using novel gadB and gadC multispecies primers for the development of new functional foods. Int J Mol Sci. 2024;25(24):13696.
  27. Yogeswara IBA, Maneerat S, Haltrich D. Glutamate decarboxylase from lactic acid bacteria — A key enzyme in GABA synthesis. Microorganisms. 2020;8(12):1923.
  28. Ngo DH, Tran QT, Nguyen TNH, Huynh AT, Vo TKT, Nguyen TB, et al. Isolation and selection of high gamma aminobutyric acid-producing Lactobacillus strains from traditional fermented foods. J Vietnam Agr Sci Technol. 2021;65(1):20-22.
  29. Yogeswara IBA, Kusumawati IGAW, Sumadewi NLU, Rahayu ES, Indrati R. Isolation and identification of lactic acid bacteria from Indonesian fermented foods as γ-aminobutyric acid-producing bacteria. Int Food Res J. 2018;25:1753-1757.
  30. Papadimitriou K, Alegría A, Bron PA, de Angelis M, Gobbetti M, Kleerebezem M, et al. Stress physiology of lactic acid bacteria. Microbiol Mol Biol Rev. 2016;80(3):837-890.
  31. Sionek B, Szydłowska A, Trząskowska M, Kolozyn-Kraiewska D. The impact of physicochemical conditions on lactic acid bacteria survival in food products. Fermentation. 2024;10(6):298.
  32. Chemlal-Kherraz D, Sahnouni F, Matallah-Boutiba, Zitouni B. The probiotic potential of lactobacilli isolated from Nile tilapia (Oreochromis niloticus)’s intestine. Afr J Biotech. 2012;11(68):13220-13227.
  33. Nguyen PH, Le DT, Tran TM, Nguyen HH. The survey of tolerance to low pH condition and antibiotic resistance of lactic acid bacteria isolated from goat’s milk and probiotics. Can Tho Uni J Sci. 2014;34:8-17.
  34. Tawab FIA, Elkadr MHA, Sultan AM, Hamed EO, El-Zayat AS, Ahmed MN. Probiotic potentials of lactic acid bacteria isolated from Egyptian fermented food. Sci Rep. 2023;13(1):16601.
  35. Collado MC, Surono I, Meriluoto J, Salminen S. Indigenous dadih lactic acid bacteria: Cell-surface properties and interactions with pathogens. J Food Sci. 2007;72(3):M89-M93.
  36. Lukic J, Strahinic I, Milenkovic M, Nikolic M, Tolinacki M, Kojic M, et al. Aggregation factor as an inhibitor of bacterial binding to gut mucosa. Microb Ecol. 2014;68(3):633-644.
  37. Do TBT, Nguyen TDH. Determination of probiotic properties and the salt intolerance of lactic acid bacteria strains isolated from gut of pompano. HUAF J Agric Sci Technol. 2008;2(2):799-806.
  38. Nguyen TXH, Nguyen NP, Nguyen THL, Do TBT, Nguyen TDH, Nguyen TTG. Potential lactic acid bacteria isolated from fermented anchovy sauce as probiotics in aquaculture. Hue Univ J Sci: Agric Rural Dev. 2022;131(3A):49-60.
  39. Rahman MM, Kim WS, Kumura H, Shimazaki K. Autoaggregation and surface hydrophobicity of bifidobacterial. World J Microbiol Biotechnol. 2008;24(8):1593-1598.
Creative Commons License

công trình này được cấp phép theo Creative Commons Ghi công-Chia sẻ tương tự 4.0 License International .

Bản quyền (c) 2026 Array