TUYỂN CHỌN VÀ XÁC ĐỊNH ĐIỀU KIỆN NUÔI CẤY THÍCH HỢP CHO SINH TỔNG HỢP AMYLASE CỦA CÁC CHỦNG VI NẤM BIỂN PHÂN LẬP TỪ VỊNH NHA TRANG VÀ VỊNH VÂN PHONG, TỈNH KHÁNH HÒA
PDF

Từ khóa

amylase
Aspergillus aculeatus
vi nấm biển
Vịnh Nha Trang
Vịnh Vân Phong.

Cách trích dẫn

1.
Thuỷ PT, Sở Đinh T, Duy NV. TUYỂN CHỌN VÀ XÁC ĐỊNH ĐIỀU KIỆN NUÔI CẤY THÍCH HỢP CHO SINH TỔNG HỢP AMYLASE CỦA CÁC CHỦNG VI NẤM BIỂN PHÂN LẬP TỪ VỊNH NHA TRANG VÀ VỊNH VÂN PHONG, TỈNH KHÁNH HÒA. hueuni-jns [Internet]. 30 Tháng Sáu 2020 [cited 28 Tháng Mười-Một 2024];129(1C):59-67. Available at: https://jos.hueuni.edu.vn/index.php/hujos-ns/article/view/5449

Tóm tắt

Nấm biển đóng vai trò quan trọng trong các hệ sinh thái biển và cung cấp nhiều sản phẩm có giá trị công nghiệp. Mục tiêu của nghiên cứu này là nhằm tuyển chọn chủng nấm biển sinh enzyme amylase phân lập ở Vịnh Nha Trang và Vịnh Vân Phong, và nghiên cứu các điều kiện thích hợp để thu nhận enzyme amylase có hoạt độ cao. Kết quả cho thấy, tất cả các chủng nấm men không thể hiện hoạt tính amylase (0/114 chủng), trong khi các chủng nấm mốc có hoạt tính amylase với tỷ lệ cao 73,9% (34/46 chủng). Trong số này, chủng DM12M có hoạt độ amylase cao nhất (13,0 U/ml). Môi trường nuôi cấy thích hợp cho sinh tổng hợp enzyme amylase là môi trường Czapeck- Dox cải tiến với 1% tinh bột tan, 0,3% NaNO3, 0,5% NaCl, nuôi cấy trong 5 ngày ở pH 6,0 và 30°C. Trong điều kiện này, hoạt độ amylase của chủng DM12M đạt 59,0 U/ml, cao hơn khoảng 4 lần so với điều kiện môi trường trước khi tối ưu. Chủng DM12M có trình tự đoạn gen ITS1- 5,8S- ITS2 tương đồng 99,8% - 100% với các chủng của loài Aspergillus aculeatus nên có thể thuộc về loài này. Kết quả nghiên cứu cung cấp dữ liệu khoa học về các yếu tố ảnh hưởng đến khả năng sản sinh enzyme amylase của vi nấm biển và mở ra tiềm năng ứng dụng của chúng trong công nghiệp.

https://doi.org/10.26459/hueuni-jns.v129i1C.5449
PDF

Tài liệu tham khảo

  1. Vaidya S, Srivastava PK, Rathore P, Pragya R, Pandey AK. Amylases: a prospective enzyme in the field of biotechnology. The Journal of Applied Biosciences. 2015; 41: 1-18.
  2. Mohapatra B, Banerjee U, Bapuji M. Characterization of a fungal amylase from Mucor sp. associated with the marine sponge Spirastrella sp. Journal of Biotechnology. 1998;60:113–117.
  3. Li HF, Chi ZM, Wang XH, Duan XH, Ma LY, Gao LM. Purification and characterization of extracellular amylase from the marine yeast Aureobasidium pullulans N13d and its raw potato starch digestion. Enzyme and Microbial Technology. 2007;40:1006-1012.
  4. Sahoo K, Dhal N, Das R. Production of amylase enzyme from mangrove fungal isolates. African Journal of Biotechnology. 2014;13(46):4338-4346.
  5. Lanka S, Pydipally M, Latha JNL. Extraction and activity studies of industrially important enzymes from marine fusarium species isolated from Machilipatnam sea water, (a.p), India. European Journal of Pharmaceuticaland Medical Research. 2016;3(12): 254-258.
  6. Wang Y, Barth D, Tamminen A, Wiebe MG. Growth of marine fungi on polymeric substrates. BMC Biotechnology. 2016;16(3).
  7. Bình NTT. Nghiên cứu thu nhận enzym amylase của một số chủng nấm sợi phân lập từ rừng ngập mặn Cần Giờ [Luận văn]. Hồ Chí Minh: Trường Ðại học Sư phạm Thành phố Hồ Chí Minh; 2010.
  8. Lan PTN, Thành HN. Nghiên cứu nấm mốc có khả năng phân giải tinh bột phân lập từ ao nuôi tôm ở Đầm Sam – Chuồn, Thừa Thiên Huế Trường Đại học Khoa học, Đại học Huế. Tạp chí khoa học Đại học Huế. 2012;73(4):147-156.
  9. Bernfeld P. Amylases, α and β. Methods in Enzymology. 1955;1:149-58.
  10. Toju H, Tanabe AS, Yamamoto S, Sato H. High-coverage ITS primers for the DNA-based identification of ascomycetes and basidiomycetes in environmental samples. PLoS ONE. 2012;7(7): e40863.
  11. Tamura K, Stecher G, Peterson D, Filipski A, Kumar S. MEGA6: Molecular evolutionary genetics analysis version 6.0. Molecular Biology and Evolution. 2013;30:2725-2729.
  12. Ominyi MC. Optimization of α-amylase and glucoamylase production from three fungal strains isolated from Abakaliki, Ebonyi State. European Journal of Experimental Biology. 2013;3(4):26-34.
  13. Mahapatra S, Banerjee D. Production and characterization of thermal acid amylase from A. aculeatus DBF9. Dynamic Biochemistry, Process Biotechnology and Molecular Biology. 2012;6(1): 109-112.
  14. Khokhar I, Mukhtar I,Mushtaq S. Comparative studies on the amylase and cellulase production of Aspergillus and Penicillium. Journal of Applied Sciences and Environmental Management. 2011;15(4):657-661.
  15. Poonsrisawat A, Paemanee A, Wanlapatit S, Piyachomkwan K, Eurwilaichitr L, Champreda V. Simultaneous saccharification and viscosity reduction of cassava pulp using a multi-component starch- and cell-wall degrading enzyme for bioethanol production. 3 Biotech. 2017;7(5):290.
Creative Commons License

công trình này được cấp phép theo Creative Commons Ghi công-Chia sẻ tương tự 4.0 License International .

Bản quyền (c) 2020 Array