In vitro propagation of Phalaenopsis sp. in Thua Thien Hue
PDF (Vietnamese)

Keywords

lan Hồ điệp
Phalaenopsis sp.
nhân giống in vitro
nhân nhanh chồi
tạo rễ orchid
Phalaenopsis sp.
in vitro
shoot multiplication
rooting

Abstract

Flower stalk nodes of Phalaenopsis sp. were used as initial materials for in vitro propagation. The flower stalks sterilized with 0.3% HgCl2 for 20 min exhibit the highest survival rate (66.67%). Flower stalk nodes were transferred to the MS medium, supplemented with BAP (0–5 mg·L–1). The optimal medium for shoot regeneration is MS, supplemented with 4 mg·L–1 BAP; all shoots are regenerated. The average shoot per explant is 4.22. The shoot multiplication results show that the MS supplemented with 2.5 mg·L–1 BAP and 0.2 mg·L–1 IBA is the best multiplication medium, providing 6.33 shoots per explant with an average shoot height of 2.75 cm. The healthy, 4–5 cm high shoots with 3–4 leaves were transferred to the MS medium, supplemented with 1.5 mg·L–1 NAA and 0.5 g·L–1 activated charcoal. All shoots formed roots, and the average number per shoot is 4.33. After rooting, the 5-cm high seedlings were grown on the sphagnum moss and sprayed with a 6 mg·L–1 nanosilver solution every seven days. The best growth was observed after eight weeks.

https://doi.org/10.26459/hueunijard.v131i3A.6342
PDF (Vietnamese)

References

  1. Runkle E., Wang Y. T., Blanchard M. G., Lopez R. G. (2007), Growing the Best Phalaenopsis, Part 1: An Introduction to Potted Phalaenopsis Orchids, Orchids, 76(1), 24–29.
  2. Thạch N. Q, Anh N. T. L, Hải N. T. L (2005), Lan Hồ điệp (Phalaenopsis) kỹ thuật chọn tạo, nhân giống và nuôi trồng, Nxb. Nông nghiệp, Hà Nội.
  3. Nhựt D. T, Trâm H. N, Huy N. P, Khiêm Đ. V (2009), Ảnh hưởng của nước dừa và sucroza lên sự tăng sinh mô sẹo và sự hình thành phôi vô tính ở loài lan Hồ điệp (Phalaenopsis amabilis (L.) Blume), Tạp chí Sinh học, 31(1), 77–84.
  4. Sơn N. T, Thạch N. Q, Anh N. T. L, Nga H. T, Nguyệt H. T. A (2014), Nhân dòng vô tính cây lan Hồ Điệp Phalaenopsis yukidian (Hồ Điệp hoa trắng nhị vàng), Tạp chí Khoa học và Phát triển, 12, 1283–1293.
  5. Tùng H. T, Nguyễn Phúc Huy, Nam N. B, Luận V. Q, Hiền V. T, Phượng T. T. B, Nhựt D. T (2016), Tác động của nano bạc lên khả năng tăng trưởng của cây cúc trong hệ thống vi thủy canh, Tạp chí Công nghệ Sinh học, 14(3), 461–471.
  6. Đông Đ. V (2011), Hoàn thiện quy trình nhân giống và sản xuất một số giống hoa lan Hồ Điệp theo quy mô công nghiệp, Báo cáo tổng hợp kết quả Khoa học Công nghệ dự án.
  7. Phương B. T. T, Lan N. P, Trang Đ. T. K, Trâm T. B, Minh P. X. B (2020), Ảnh hưởng của nano bạc đến khả năng nhân giống in vitro cây Trầu tiên (Asarum glabrum Merr.), Tạp chí Khoa học và Công nghệ Việt Nam, 62(6), 19–23.
  8. Balilashaki K., Naderi R., Kalantari S., Soorni A. (2014), Micropropagation of Phalaenopsis amabilis cv. Cool 'Breeze' with using of flower stalk nodes and leaves of sterile obtained from node cultures, International Journal of Farming and Allied Sciences, 3(7), 823–829.
  9. Cường Đ. M, Phượng T. T. B, Nhựt D. T (2018), Ảnh hưởng của nano bạc lên khả năng cảm ứng mô sẹo và tái sinh chồi từ mẫu lá cây dâu tây (Fragaria x ananassa) nuôi cấy in vitro, Tạp chí Khoa học Đại học Huế: Khoa học Tự nhiên, 127(1C), 61–70.
  10. Nhựt D. T, Tuấn N. X, Anh N. T. T, Long H. V, Tùng H. T, Nam N. B và cs. (2015), Nghiên cứu ảnh hưởng của nano bạc lên sự nhân chồi, sinh trưởng và phát triển của cây hoa hồng (Rosa sp.) in vitro, Tạp chí Công nghệ Sinh học, 13(2), 231–239.
  11. Murashige T., Skoog F. (1962), A Revised Medium for Rapid Growth and Bio Assays with Tobacco Tissue Cultures, Physiol Plant, 15, 473–497.
  12. Pha N. T, Mai T. T. X, Trang L. T. M, Liên N. T (2011), Nuôi cấy mầm ngủ phát hoa lan Hồ Điệp (Phalaenopsis sp.), Tạp chí Khoa học, Trường Đại học Cần Thơ, 20b, 12–20.